做科研实验，计算是一个十分重要的过程，这关系到整个实验的成功与否。比如摩尔浓度（mol/L）和溶质质量（g），OD260的换算等，而牢记一些常用的小公式和换算单位就可以解决大部分计算问题！
1.单位换算
1ng=10-3ug=10-6mg=10-9g=10-12kg
1cm3=10-3dm3=10-6m3=1mL=10-3L
1kDa=103Da
2.摩尔浓度（mol/L）和溶质质量（g）
m (g) = 摩尔浓度(mol/L) x V溶剂 (L) x M溶质 (g/mol)
1M=1mol/L
3.稀释倍数（n）和稀释液体积（V）
稀释倍数n =（终浓度×终体积）/（原液浓度×原液体积）
稀释液体积=终体积—原体积
4.OD260的换算
CDNA/RNA (μg/ml) = OD260值×换算系数
1 OD260 unit=50μg/ml，dsDNA
1 OD260 unit=40μg/ml，ssRNA
1 OD260 unit=33μg/ml，ssDNA
这里的μg/ml也就是ng/μl，所以和Nanodrop测出来的单位是相同的。值得注意的是，这里的每一个OD260对应的核酸浓度只是估算值，毕竟碱基组成不同也会造成折光度的差异，所以在有的网站上，这三组值也会略有差异。
5.核酸碱基对与分子量的换算
核酸碱基对与分子量的换算
1Kb dsDNA (Na+)=6.6×105Da
1Kb ssDNA (Na+)=3.3×105Da
1Kb ssRNA (Na+)=3.4×105Da
脱氧核苷酸的平均分子量=324.5 Da(～330Da)
6.引物量的计算
（1）引物浓度=pmole（绝对数量）/μl
例：100μlPCR反应液中含20pmole引物=0.2μM
（2）引物绝对数量（pmole）=重量（μg）×106/（引物长度×327）
例：0.1μg的20个核苷酸的寡聚物含有的引物绝对数量是：0.1μg×106/（20×327）=15.3pmole引物
7.将蛋白质换算成DNA的长度
分子量1000Da的蛋白质=270bp DNA
分子量37000Da的蛋白质(对应编码333个氨基酸的能力)=1000bpDNA
分子量100000Da的蛋白质=2.7kbDNA
8.核酸分子量计算方程式
吸光度(A)＝摩尔消光系数×浓度×长度
500 bp的双链DNA＝325,000 Daltons
500 nt*的单链DNA＝162,500 Daltons
*nt = nucleotide
dNMP的平均分子量＝325 Daltons
9.细胞因子活性单位换算
通常在细胞因子的活性检测中1unit=1ED50
例：某细胞因子ED50=1.0ng/ml, 则1.0ng/ml相当于1 unit，那么1 mg这个细胞因子中含有多少个units呢？用下面的计算公式即可算出：
所以1mgPDGF-BB中含有106Units
备注：ED50是Effective Dose 50的缩写，中文意为“半数有效浓度”，是可诱导50%最大反应的细胞因子浓度。
10.寡聚体定量
20-mer，A260 = 1的贮存液含有5 nmol寡聚体：5 nmol = 33 µg/(20×325)
40-mer，A260 = 1的贮存液含有5 nmol寡聚体：2.5 nmol = 33 µg/(40×325)
11.寡聚体DNA分子量（MW）的精确算法
一般而言，寡聚体DNA的精确分子量可根据下述公式进行计算：
MW＝（A碱基数×312）＋（C碱基数×288）＋（G碱基数×328）＋（T碱基数×303）－61
例：TGGGCGGCGGTTGGTGTTACG
A=1 C=3 G=11 T=6
MW ＝（1×312）＋（3×288）＋（11×328）＋（6×303）－61 ＝6541
12.A260单位(核酸OD值)的换算：
1A260(1 OD)单位的双链DNA＝50ｕg/ml
1A260(1 0D)单位的单链DNA＝40ｕg/ml
1A260(1 OD)单位的单链RNA＝40ｕg/ml
1A260(1 OD)单位的寡核苷酸＝33ｕg/ml
例Ⅰ：取某DNA样品溶液5ｕl，加水至1000ｕl，在UV260nm时，测得的OD值是0.2，问原溶液中的DNA浓度(ｕg/ｕl)是多少？
解：0.2×50ｕg/ml＝10ｕg
这表示5ｕl样品溶液共有10ｕg DNA，所以该样品DNA浓度应是：
10ｕg/5ｕl＝2ｕg/ｕl
13.PCR扩增反应引物浓度的计算
引物毫摩尔浓度（mM）= pmoles/µl
例1：100µl PCR反应体系中有20pmol的引物 = 0.20 mM
例2：引物为24bp，并溶解于0.1ml µl H2O中；
10µl溶液稀释至1.0ml测定其A260为：A260 = OD260 = 0.76；
则贮存液在260nm（A260）的吸光度为76；
0.1ml的贮存液含有7.6个单位的A260；
引物碱基组成为：A=6, C=6, G=6, T=6；
260nm引物的摩尔消光系数 = a(16,000) + b(12,000) + c(7,000) + d(9,600)
注：a、b、c、d分别是 A's、G's、C's、T's的碱基个数；
PCR引物的摩尔消光系数= 6(16,000) + 6(12,000) + 6(7,000) + 6(9,600) = 267,600
则PCR引物贮存液的摩尔浓度为：76/267,600 = 284 mM
14.DNA溶液纯度测定
一般情况下，应用紫外分光光度计测定DNA溶液在A230、A260和A280下的吸收光值，便可以很好地确定DNA溶液的纯度，通常只测A260和A280两个吸收光度便可满足要求。因为纯的DNA溶液其A260/A280的比值约为1.8-1.9，而其A260/A230的比值则应大于2.0，所以当：
a. A260/A280＞1.8时，表明RNA污染严重
b. A260/A280＜1.6时，表明有明显的蛋白质或苯酚的污染
c A260/A280＜2.0时，表明溶液中有残存的核苷酸、氨基酸、酚、盐等小分子杂质
这样的DNA样品溶液需重新处理：
在a情况下，可考虑用RNA酶处理之，在b和c的情况下，可考虑用蛋白酶K以酚/氯仿抽提，乙醇沉淀重新处理样品。在SDS和EDTA的存在的条件下，proteinase K仍具有很高的活性，因此在DNA降解酶活力被抑制的情况下，使用proteinase K仍可以消除蛋白质，为制备高纯度高分子量的DNA制品创造了条件。
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