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浆膜腔积液或液体标本细胞学涂片的制做方法
浆膜腔积液或液体标本细胞学涂片的制做方法

时间:2004-2-3 0:03:04 来源:mbw 作者:mbw 阅读2123次
 
    涂片的制作是关系到细胞学诊断的成败关键,传统的沉淀方法,只要认真就可以做出可供诊断的优质涂片。下面介绍一种棉球/海绵块印片法:
采集到的积液标本应及时送检,接到送检标本也应立即离心处理,以保持标本的新鲜性。标本无需加固定液和防腐剂,因为经这样处理的标本离心沉淀后因蛋白质凝固,与载玻片结合(粘着)度低,在染色过程中有可能掉片(使细胞脱离玻片),尤其在免疫细胞化学染色时更易掉片。
送检的积液标本要求量愈多愈好,一般在100ml至500ml之间为宜。将标本在阴凉处静置5分钟,轻轻倒去一半左右;若多于100ml应再次静置5分钟,弃去一半,直至50ml左右的自然沉淀标本,分别置于两个容量为50ml塑料离心管中。平衡后以2000转/分钟的速度离心5分钟左右,轻轻取出离心管至污水池中将离心管底朝上彻底倒去上清液。采用镊子夹脱脂干棉球或一小块海棉(最好还是棉球)沾取沉淀物,在玻片上轻轻印片,稍置片刻,潮干情况下置95%乙醇固定液中2小时以上,进行染色。此法的优点是因棉球将液体吸入内部,而棉球表面的大量细胞成分被印在载玻片上,其片薄而均匀,细胞数量多,结构清晰,背景干凈。该法的关键是水份极少被涂在玻片上,摒弃了过去采用吸管的方法,吸管法使过多的水份被留滞在玻片上,从而使细胞及其背景蒙上一层着色物,影响清晰度。
    这里要特别指出,以下几点是制作一张好涂片的关键:
    (1)送检标本必须抽吸后立即送检,接受标本也要立即进行处理;
    (2)标本量要求多,多涂片用于多种染色有助于确立诊断;
    (3)液体标本内不加固定剂或防腐剂;
    (4)阶梯式沉淀:自然沉淀和离心沉淀结合进行;
    (5)彻底倒去上清液,剩余水分越少越好。沉淀物不能直接放在玻片上,采用棉球或泡沫塑料等具有吸水性的物体,将沉淀物中的剩余水份吸出,其表面则为附着的细胞成分;
(6) 印片时动作要轻,印片面积及张数自定,不可用力过重;
(7) 玻片在潮湿状态下投入固定液,固定2小时以上。
涂片的数量一般在2-4张为宜,可分别做各种常规染色,若进行细胞化学染色或免疫细胞化学染色可适当多做一些涂片。经上述步骤处理的标本,也可用于电镜取材,方法是用刀片切下约一半的棉球沾取的沉淀物,但不可带棉纤维,然后装入戊二醛固定液送检。还可用细胞块做石蜡切片。
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