免疫共沉淀超详细操作步骤

一、准备工作

预冷PBS，RIPA Buffer，细胞刮子（用保鲜膜包好后，埋冰下），离心机

二、操作步骤

用预冷的PBS洗涤细胞两次，最后一次吸干PBS；
加入预冷的RIPA Buffer(1ml/10⁷个细胞、10cm培养皿或150cm²培养瓶，0.5ml/5×10⁶个细胞、6cm培养皿、75cm²培养瓶)
用预冷的细胞刮子将细胞从培养皿或培养瓶上刮下，把悬液转到1.5EP管中，4℃，缓慢晃动15min（EP管插冰上，置水平摇床上）
4℃，14000g离心15min，立即将上清转移到一个新的离心管中
准备Protein A agarose，用PBS 洗两遍珠子，然后用PBS配制成50%浓度，建议减掉枪尖部分，避免在涉及琼脂糖珠的操作中破坏琼脂糖珠
每1ml总蛋白中加入100μl Protein A琼脂糖珠（50%），4℃摇晃10min（EP管插冰上，置水平摇床上），以去除非特异性杂蛋白，降低背景
4℃，14000g离心15min，将上清转移到一个新的离心管中，去除Protein A珠子
(Bradford 法)做蛋白标准曲线，测定蛋白浓度，测前将总蛋白至少稀释1：10倍以上，以减少细胞裂解液中去垢剂的影响（定量，分装后，可以在-20℃保存一个月）
用PBS将总蛋白稀释到约1 μg/μl，以降低裂解液中去垢剂的浓度，如果目的蛋白在细胞中含量较低，则总蛋白浓度应该稍高（如10 μg/μl）
加入一定体积的兔抗到500μl总蛋白中，抗体的稀释比例因目的蛋白在不同细胞系中的多少而异
4℃缓慢摇动抗原抗体混合物过夜或室温2h，激酶或磷酸酯酶活性分析建议用2 h室温孵育
加入100μl Protein A琼脂糖珠来捕捉抗原抗体复合物，4℃缓慢摇动抗原抗体混合物过夜或室温1h，如果所用抗体为鼠抗或鸡抗，建议加2 μl”过渡抗体”（兔抗鼠IgG，兔抗鸡IgG）
14000rpm瞬时离心5s，收集琼脂糖珠-抗原抗体复合物，去上清，用预冷的RIPA buffer洗3遍，800μl/遍，RIPA buffer有时候会破坏琼脂糖珠-抗原抗体复合物内部的结合，可以使用PBS。
用60μl 2×上样缓冲液将琼脂糖珠-抗原抗体复合物悬起，轻轻混匀，缓冲液的量依据上样多少的需要而定（60 μl足够上三道）
将上样样品煮5min，以游离抗原，抗体，珠子，离心，将上清电泳，收集剩余琼脂糖珠，上清也可以暂时冻-20℃，留待以后电泳，电泳前应再次煮5min变性。

三、注意点

A：不熟练使用移液枪，会混入沉淀的不溶性蛋白，使实验失败。对无论怎么也除不去的混入蛋白，只使用上清的上半部，或用超速离心机。

B：对电泳的非特异条带，最后可依次用含300mM，1omMNaCl的RIPA洗净各一次。

四、液体配制

1.RIPA Buffer配制：

基础成分：

Tris-HCl（缓冲液成分，防止蛋白变性）

NaCl（盐份，防止非特异蛋白聚集）

NP-40（非离子去污剂，提取蛋白；用H2O配制成10%储存液）

去氧胆酸钠（离子去污剂，提取蛋白；用H2O配制成10%储存液；避光保存）

注意：准备激酶（致活酶）实验时，不要加去氧胆酸钠，因为离子型去污剂能够使酶变性，导致活性丧失。

2.RIPA蛋白酶抑制剂

苯甲基磺酰氟（PMSF）（用异丙醇配制成200mM的储存液，室温保存）

EDTA（钙螯合剂；用H2O配制成100mM的储存液，PH 7.4）

亮抑酶肽（Leupeptin）（用H2O配制成1mg/ml的储存液，分装，-20℃保存）

抑蛋白酶肽（Aprotinin）（用H2O配制成1mg/ml的储存液，分装，-20℃保存）胃蛋白酶抑制剂（Pepstatin）（用甲醇配制成1mg/ml的储存液，分装，-20℃保存） 3.RIPA磷酸（酯）酶抑制剂

激活的Na3VO4（用H2O配制成200mM的储存液）

NaF（200mM的储存液，室温保存）

文章转自英格恩生物技术博客！

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