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【衡道丨笔记】「白求恩·肿瘤病理学社」「肺」常病理时间课程学习笔记(二)

「白求恩·肿瘤病理学社」项目由白求恩公益基金会发起,旨在提升相关疾病病理诊断的规范化,进一步扩大和实现精准治疗前的准确诊断。

今天由上海市肺科医院的谢晓枫老师带来肺癌病理诊断系列课程《「肺」常病理时间》第二讲:《非小细胞肺癌ALK的检测方法的比较》的配套学习笔记。

上海市肺科医院

住院医师 硕士

谢晓枫

一、 NSCLC分子检测背景

  • 过去的十几年间,非小细胞肺癌的分子分型改变了其治疗模式;随着靶向治疗的开展,靶向检测需求日益增加;

  • 中国人的腺癌常可见驱动基因改变(EGFR、ALK、ROS-1等等);

  • 晚期非小细胞肺癌,推荐进行靶向检测。

二、 ALK基因概述

  • ALK是一种肿瘤相关的基因;ALK蛋白只有在胚胎时期、神经系统的发育过程中可以表达。但成熟的其他组织不会表达ALK蛋白;

  • 2007年学者首次发现EML4-ALK融合基因,并能独立成瘤,而且是强致病基因;

  • ALK基因是非小细胞癌中相对常见的融合基因;

  • 不同的肿瘤当中都可以有ALK的融合,但融合方式可以不一样(与不同的基因partner);但无论何种融合,都会有磷酸激酶区。针对该区域设计的探针,使得ALK的检测在各个肿瘤当中都获得了成功。

图示, 不同的ALK融合蛋白均表达磷酸激酶区(绿色区域)。NSCLC(非小细胞肺癌),间变性大细胞淋巴瘤(ALCL)、炎性肌纤维母细胞肿瘤(IMT),弥漫大B 细胞性淋巴瘤(DLBCL),肾细胞癌(Renal cell carcinoma,RCC)很多肿瘤都可显示ALK基因的融合

三、关于ALK+非小细胞肺癌(NSCLC)

  • ALK突变频率在3%~7%之间,中国人群约5%。不同种族间的ALK+ NCSLC发生率相对一致;

  • ALK+NSCLC患者的中位年龄约为50岁,比其他NSCLC患者更年轻(~70岁);

  • ~70% ALK+NSCLC患者从不吸烟;

  • ≥95% ALK+NSCLC患者的组织学类型为腺癌;

  • ALK与其他基因突变互斥,~98% ALK重排NSCLC患者不存在EGFR或KRAS突变。

四、ALK阳性晚期NSCLC药物获批情况

NCCN指南对ALK抑制剂在NSCLC一线使用的推荐

NCCN推荐ALK阳性非小细胞肺癌的一线治疗药物:塞瑞替尼、阿来替尼、布加替尼、克唑替尼,均为一类推荐。

五、为何推荐检测ALK基因?

钻石突变—只有检测出来才能发光

ALK阳性NSCLC又称钻石突变---虽然ALK突变频率相对于EGFR还是较低,但是ALK突变的患者其对于ALK抑制剂疗效很好,客观缓解率包括PFS,OS都大大延长。所以一旦有ALK突变,基本会大大受益于靶向治疗,延长生存。只要检测到这颗钻石突变,就给患者带来的新的希望,非常推荐对其进行检测。

六、中国ALK阳性的NSCLC如何定义?

几个版本的指南对于ALK阳性都有所定义。目前,荧光原位杂交FISH检测、实时荧光定量PCR(RT-PCR)检测、免疫组织化学(IHC)检测到ALK阳性,统称为“ALK阳性非小细胞肺癌”。

→But:“A bad tumor biomarker test is as bad as a bad drug”

---Current president of ASCO, Daniel F. Hayes

准确检测出ALK融合基因阳性晚期NSCLC患者具有重要临床意义:

  • 避免假阴性;

  • 避免假阳性。

指南推荐下的中国非小细胞肺癌患者的诊断流程。

张绪超,等.中华病理学杂志.2018;47(4) :241-247.

七、ALK融合基因的检测方法概述

  1. ALK fushion gene Detected by FISH

    它可以检测到所有的融合类型,但不能区分ALK基因的partner;

  2. Detected by PCR

    因为是设计的已知突变的引物,所以只能检测到已知的融合类型,不能检测未知融合类型;

  3. Detected by ALK protein

    免疫组化方法,阳性为棕黄色着色。只要有ALK融合基因便可以表达ALK蛋白,但是也不能区分具体融合的类型;

  4. NGS

而ALK检测的过程中,有哪些因素需要考虑?

  1. 检测的各个平台靠不靠谱?

  2. ALK结果怎样标准化的判读?

  3. 如何保证报告的规范性?

NMPA批准的ALK重排检测方法:

  1. NGS→燃石(4基因试剂盒)、诺和致源(6基因试剂盒)、世和(6基因试剂盒)、厦门艾德(10基因试剂盒)、华大(3基因试剂盒)、吉因加(3基因试剂盒)、泛生子(8基因试剂盒);

  2. FISH→ALK FISH(雅培),ALK重排检测试剂盒(益善生物);

  3. IHC→VENTANA ALK IHC(罗氏诊断);

  4. RT-PCR(AmoyDx EML4-ALK Real Time PCR—艾德;人EMA4-ALK融合基因检测试剂盒荧光PCR法-雅康博;人类EMA4-ALK融合基因检测试剂盒PCR-荧光探针法—艾德;人EGFR/ALK/ROS-1突变检测试剂盒PCR-荧光探针法—艾德)。

八、 基于DNA的荧光原位杂交(FISH)检测ALK基因重排---金标准

原理:

a.直接(或间接)标记了荧光的DNA探针与其互补的目标DNA杂交,通过观察荧光信号的位置来反应基因情况;

b.ALK探针采用分离探针,基因易位ALK重排后,红色和绿色信号分离;

c.结果判定:50%出现红绿分离或者绿信号缺失(单红)。

样本中≥15%细胞红色和绿色信号分开表示阳性结果

判读标准

记录50个肿瘤细胞的信号模式

大于25个细胞阳性—判为阳性

小于5个细胞阳性—判为阴性

5-25个细胞阳性—可疑阳性—第二位读者(或者重新数50个细胞)

第一位和第二位读者的平均值(或两次技术平均值)

小于15%细胞阳性—阴性

大于等于15%细胞阳性—阳性

阳性结果:

标准:分开的红/绿信号

非典型:分开 + 单个红点

非典型:单个红点

阴性结果:

标准:融合信号

非典型:单个绿点

FISH假阴性的原因:ALK-EML4倒位融合后且伴有不同位置或区段的缺失,而导致红点缺失、或红绿都缺失等情况,导致不满足上述两类阳性信号类型的判读。

FISH检测ALK重排的局限性

  1. 对技术和操作的要求较高难度较大;

  2. 目前FISH检测的成本相对昂贵;

  3. 小活检组织,很难保证每个视野均存在50个以上的肺癌细胞进行判读;

  4. FISH检测结果的判读 临界值也存在商榷之处。

→以上局限性导致该方法无法适用于中国ALK阳性非小细胞肺癌患者的大规模筛查和诊断。

九、基于RNA水平融合基因检测——实时逆转录(RT-PCR)

原理

Soda, et al. Clin Cancer Res. 2012

CFDA批准的RT-PCR检测试剂盒

RT-PCR方法的优势:

操作简单,时间短;

结果客观,易于判读,减少人为因素的影响;

除FFPE样本外,还适用其他类型样本组织。

而基于RNA的检测:未包含NSCLC中的罕见ALK 融合类型

  • 在非小细胞肺癌中已确定了几种EML4-ALK 融合变异体,并证明其具有功能活性;

  • 转化需要ALK酪氨酸激酶的活性;

  • 越来越多的罕见融合类型被发现。

RT-PCR检测平台注意事项

  1. 仅能检测已知融合;

  2. PCR方法对于检测环境及标本要求较高;

  3. 阈值附近样本判读需谨慎,必要时换平台验证。

十、基于蛋白的IHC方法

优势:ALK野生型的NSCLC,ALK蛋白几乎没有内源性表达。

  • ALK基因融合由于驱动性强,所以在肿瘤组织中异质性低,绝大部分病例蛋白表达均匀一致;

  • 即使细胞少,IHC检测出ALK阳性也没有问题;

  • ALK基因融合在NSCLC当中发生频率低,PCR、FISH的方法不适宜大规模的筛查。

缺点:

  • 发生异位之后的ALK表达强度弱,普通的抗体(ALK1或者ALK-SP8或者5A4等)检测ALK融合蛋白敏感性及特异性均较差;

  • 常规IHC结果(不是ventana)不能指导克唑替尼用药。

ALK Ventana

设计原理:在常规IHC之后加入扩增信号,并且通过充分洗涤一抗避免假阳性----创建一个“二元”的判读系统

Ventana IHC 特点:

  • 使用具有高度敏感性和特异性 的一抗——D5F3

  • 全自动仪操作,充分保证特异 性

  • 独有Optiview扩增技术,充分 保证敏感性

普通IHC(非Ventana D5F3抗体)检测ALK融合基因仅用于初筛

ALK1 敏感性较低(67%)

5A4 敏感性及特异性高(95%-100%),但缺乏更多依据

D5F3(非体外诊断试剂)

1A4 特异性较低(70%)

ALK Ventana 的规范化质控

1. 设置阳性和阴性对照

2. 弥漫的、强的、颗粒状着色

常见的判读疑难问题

非肿瘤细胞的假阳性信号:

肺泡巨噬细胞胞浆内的信号吸附

粘蛋白和炎细胞的吸附性着色

正常粘膜组织和坏死组织的非特异性着色

  • 神经源性组织(脑组织、神经纤维和神经节细胞)肿瘤细胞内的假阳性信号

  • 局灶阳性或染色强度不够(任何阳性肿瘤细胞百分比?)

  • 染色定位问题(胞膜及胞核着色)

  • 肝转移灶的假阳性

脉管内的假阳性信号(脉管内没有见到细胞,可能是一些杂质成分阳性)

肿瘤组织常可见到非特异性着色(背景着色,和ALK真正的弥漫强阳性完全不同)

腺腔内的黏液有吸附着色

巨噬细胞非特异性着色

脑转移灶内的神经胶质可以着色(神经系统发育过程中ALK可以阳性,不要当成肿瘤着色,不能看见切片当中有阳性就判为阳性)

染色不均匀—阴性

染色强度不够—阴性

非特异性核着色

胞膜着色

肺腺癌肝转移灶的非特异着色

乳腺癌肝转移灶的非特异性着色

组织固定问题导致的染色不均一

非腺癌其他类型肺癌的染色

  • 鳞癌状细胞癌中的部分阳性;

  • 涎腺型肿瘤细胞中的部分阳性;

  • 神经内分泌癌中的部分阳性。

表现为部分肿瘤细胞出现弱-中等强度胞浆内的阳性信号。

鳞癌当中ALK出现部分斑片状染色

粘液表皮样癌部分的着色

小细胞癌也可出现不同的阳性,但FISH一般为阴性

VENTANA平台注意事项

  • 非腺癌病例判读需谨慎;

  • 富含黏液分泌的病例要格外留意阳性信号的部位及真假;

  • 排除已知的染色元素,包括:肺泡内巨噬细胞、神经纤维及神经节细胞、呼吸道上皮细胞、坏死组织碎片及细胞外黏液吸附;

  • 标本的规范化处理,室内质控,室间质评尤为重要;

  • 结果不确定时,使用其他技术平台行进一步复检。

Case1:

腺癌合并大细胞神经内分泌癌病例(左边深染实性的是大细胞神经内分泌癌,右边腺管状的为腺癌)

大细胞神经内分泌癌SYN染色阳性(CgA+, Syn+, CD56+, TTF1+)

腺癌NapsinA阳性(CgA-, Syn-, CD56-, TTF1+)

ALK-D5F3

越来越多文献报道神经内分泌癌可以有ALK基因的易位,部分患者ALK抑制剂治疗有效

Case2:

  • 右上肺肿块4.5cm伴纵隔淋巴结肿大及脑转移;

  • 穿刺病理:免疫组化CgA,Syn,CD56,TTF1强阳性,结合HE形态及免疫组化结果,符合不典型类癌;

  • ALK Ventana及FISH证实ALK融合;

  • 服用Crizotinib治疗后,肺原发灶明显缩小,但12个月后颅内病灶进展。

十一、高通量测序技术(NGS)

  • 采用RNA或者DNA进行检测;

  • 采用RNAseq、多重PCR、target panel测序等技术;

  • 准确度和特异性均较高;

  • 能够发现未知融合突变;

  • 多数以检测交叉跨越read来判断融合突变;

  • 获批基因从4-10个不等;

  • NGS的质控与规范化有待进一步提高;

  • 仪器成本及维护成本高,对技术人员的要求高;

  • 检测费用昂贵,报告时间长。

1. NGS能够检测出特殊的融合类型

国内学者报道过 BIRC6-ALK融合基因

2. NGS可区分融合类型,可发现新的融合

Non-EML4-ALK融合大约占1/4;

至少有30余种不同的partner已被报道。

3. NGS可检测ALK耐药机制

ALK非依赖性的耐药机制:

  • 替代性致癌驱动基因;

  • 这一作用与EML4-ALK无关;

  • 已在ALK融合蛋白的上游和下游识别到替代性致癌驱动基因1–6:KIT(扩增)、EGFR(突变和激活) 、KRAS(突变和扩增)、IGF-1R(表达和激活) 、IRS-1(表达)、MET(激活)、MEK(突变);

ALK依赖性的耐药机制(继发性耐药)

  • ALK激酶区突变;

  • 拷贝数增加。

一代TKI主要耐药突变

  • L1196M和G1269A。

二代TKI主要耐药突变

  • G1202R;

  • 二代ALK抑制剂更多出现ALK耐药突变,达50~70%。

ALK继发性耐性突变位点

  • L1196M,I117N/S,G126A突变对塞瑞替尼敏感。

绿色表示对药物敏感,IC50值越小越敏感

ALK抑制剂耐药机制检测专家共识

  • 对于ALK抑制剂耐药的患者,基因检测内容应由临床医师和分子病理检测医师共同讨论决定(专家共识意见);

  • 耐药患者进行基因检测时,建议优先应用NGS检测,检测内容包括获得性突变和融合突变类型等(专家共识意见)。

十一、一些工作中的实际问题

不同方法对比

  • FISH:昂贵的金标准;

  • Ventana:最具性价比的标准;

  • PCR:结果详细;

  • NGS:全面。

Ventana IHC与FISH检测结果比较

很多研究表明VENTANA与ALK FISH检测具有较高的一致性

(1)Jinghui Wang,et al. PLoS ONE 2014 9(7): e101551  

(2) Eugen C. Minca,et al. J Mol Diagn 2013, 15: 341-346

(3) Murry W. Wynes,et al. J Thorac Oncol. 2014;9: 631–638 

(4) Greta,et al. Arch Pathol Lab Med. doi: 10.5858/arpa.2013-0388-OA

(5)J.Ying;et al. Annals of oncology.2013,24:2589-2593

FISH和IHC结果不一致怎么办?

Vysis ALK break-apart(阳性)

Vantana阴性(标本固定不佳)

单绿信号

Ventana D5F3阳性

ALK检测样本类型及检测策略优化推荐

ALK检测标本类型

  • 检测标本优先使用肿瘤组织标本(强烈推荐);

  • 肿瘤组织标本不满足要求时,推荐使用细胞学标本(推荐);

  • 对于少数客观上不能获得组织或细胞学标本的晚期肺癌患者,可尝试血液/脑脊液检测(专家共识意见) 。

ALK检测策略优化

  • 目前,NMPA 批准了 4 个技术平台的 ALK 基因检测随诊断 试剂 ,包 括 ALK Ventana-D5F3 IHC、FISH、RT-PCR、NGS检测平台。专家组强烈推荐这4种方法均可用于ALK基因融合检测;

  • 优先应用Ventana-D5F3 IHC进行ALK检测(强烈推荐);

  • 当和其他基因(如EGFR、ROS1等)一起检测时,可以联合FISH和RT-PCR,或进行RT-PCR或NGS多基因检测(推荐)。

ALK检测的室内外质控

  1. 规范性操作流程及性能验证;

  2. 每年两次室间质评;

  3. 设置阴性及阳性对照;

  4. 专人负责,定期总结与分析。

十二、总结

  • RT-PCR、FISH、 ALK-D5F3 Ventana IHC 、NGS均可以作为一步法诊断ALK阳性NSCLC的方法;

  • 各检测平台间存在较高的符合率, 但仍然存在IHC/FISH/RT-PCR/NGS检测结果不一致:确保染色结果是准确的;临床与病理积极沟通;

  • 在推断TKI药物疗效及预后、以及预测耐药模式等方面,NGS具有显著的优势;

  • 制定、优化及遵守规范化检测流程才能获得准确的检测结果。

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