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12篇权威文献解读PD-L1免疫疗法进展


Abcam

小艾说


PD-1/PD-L1是什么?


1992年,日本京都大学Tasuku Honjo教授首次报道并克隆了PD-1基因 [1]。

1999年,华人学者陈列平教授报道了B7家族的第三个成员B7-H1(即日后的PD-L1)[2]。

2000年Tasuku Honjo教授等人证明了PD-L1能与PD-1结合,进而抑制T细胞的增殖与细胞因子的分泌,负调控淋巴细胞的激活,从此,B7-H1被正式命名为 PD-L1(陈列平教授则继续使用“B7-H1”命名)[3]。

2003年,陈列平教授第一次成功地使用PD-L1封闭抗体联合T细胞回输技术治愈了约60%的头颈癌小鼠[4]。

2014年12月,首个应用于肿瘤治疗的抗PD-1抗体药Keytruda(MSD)获 FDA批准,三个月后,Opdivo (BMS)获FDA批准(Opdivo也将成为首个在中国大陆上市的PD-1单抗药)。

2016年FDA批准首个抗PD-L1的抗体药Tecentrip(Roche)应用于肿瘤治疗(图1)。


图 1:PD-1/PD-L1发展历程中的部分关键节点


PD-1/PD-L1工作机制是怎样的?


PD-1/PD-L1免疫检查点抑制剂在癌症研究中倍受瞩目,而恶性肿瘤的十大重要标志之一就是免疫检查点参与的免疫逃避。

PD-1与其配体PD-L1的结合会下调T细胞的活性,阻断体内免疫系统对肿瘤细胞的攻击。PD-1/PD-L1单克隆抗体是目前临床研究与应用最广泛的免疫检查点抑制剂。

当阻断PD-1与PD-L1的结合时,负调控信号被阻断,T细胞恢复活性,杀死肿瘤细胞,在多种癌症治疗过程中显示出卓越的疗效[5]。

图 2:PD-1/PD-L1抑制剂的工作机理[6]

TCR, T cell receptor; MHC, major histocompatibility complex; 

APC, antigen presenting cell


具体如图2所示,PD-1的生理功能简单来说就是免疫刹车:


当免疫系统发现外来入侵者,启动免疫攻击时,为了不误伤自身,同时也启动免疫“刹车”。因此,T细胞被激活时会表达PD-1, 而攻击性炎症因子IFN-γ会刺激细胞表达它的受体PD-L1和PD-L2。


当PD-1与它的受体结合,就会抑制免疫反应。但是狡猾的肿瘤细胞在与免疫系统的战斗中,逐渐学会了这一招:通过大量表达PD-L1实现免疫逃逸。而PD抑制剂,包括anti-PD-1或者anti-PD-L1单抗药,就是通过阻断PD-1与其受体的结合,重新激活免疫系统来攻击肿瘤细胞[6]。


为何要检测PD-L1?


PD-L1组成性低表达于抗原递呈细胞(APCs)、非造血细胞如血管内皮细胞、胰岛细胞以及免疫豁免部位(如胎盘、睾丸和眼睛)。炎性细胞因子如I/II型干扰素、TNF-α和VEGF等均可以诱导PD-L1的表达[7]。


大量研究表明,在癌症患者的样本中,PD-L1在很多情况下呈现高表达趋势[8]。在肿瘤微环境中,免疫抑制分子如PD-L1的高表达意味着当PD-1/PD-L1的结合被阻断时,患者更可能从中获益。因此对于癌症患者而言,如果PD-L1的表达水平较高,则使用PD抑制剂的疗效更为显著。目前的临床结果也印证了这一推测(图3,4)。正因为如此,PD抑制剂药物的使用,大多需要伴随/补充诊断检测PD-L1的表达,而PD-L1的检测方法主要是基于蛋白水平的免疫组化。


那么为什么不选择检测PD-1呢?在使用抗PD-1抑制剂的条件下,PD-1水平通常不会发生变化,此时检测PD-L1可以反映没有结合的PD-L1水平,从而反映药物的作用程度。而PD-L1在多种细胞表面表达,包括恶化的肿瘤细胞表面,所以高表达PD-L1的肿瘤细胞预示其免疫逃逸能力强,当使用PD抑制剂时可能更有效。当然也有报道,肿瘤浸润的T细胞中PD-1对于无进展生存期(PFS)也有一定的指示意义[10]。


实例1


关于OPDIVO(nivolumab,PD-1单抗药),BMS进行了将其应用于NSCLC(非小细胞肺癌)的临床项目(图3)。


数据表明:PD-L1的表达与OPDIVO的疗效呈一定的正相关性。应用其伴随诊断抗体28-8 (ab205921, Abcam)的IHC染色信号越强,则使用OPDIVO所获得的总体生存率(OS)越高。PD-L1阳性表达组(≥1%)的总体生存率较之PD-L1阴性表达组(<1%)有显著提升。当PD-L1的表达水平更高时(≥5%,≥10%),相应患者的死亡风险分别降低57%和60%。而对于Docetaxel(化学抗癌药)的使用,PD-L1的表达与总体生存率并无显著相关性[9]。


图 3:NSCLS 患者对OPDIVO药效(总生存期OS)与PD-L1的表达呈正相关[9]


实例2


2017年马里兰大学Greenebaum癌症中心进行了针对多发性骨髓瘤(MM)的三联免疫治疗研究[10],即PD-1单抗药,pomalidomide(免疫调节药物)及低剂量地塞米松的联合用药。研究使用PD-L1抗体28-8 (ab205921, Abcam)对病人的组织样本进行IHC染色,根据信号强度分为阳性与阴性/弱阳性两组,并观察两组病人在联合用药下的治疗反应(sCR/CR,得到了严格的完全缓解/完全缓解;VGPR,有非常好的部分缓解)。PD-L1阳性组vs阴性/弱阳性组的治疗反应(sCR/CR + VGPR)为54% vs 20%。


同时,研究对骨髓浸润的淋巴细胞中PD-1(ab52587,Abcam)的表达水平进行检测,发现其与客观缓解率(ORR)并无明显的相关性。目前,PD-L1表达水平的检测已经写进了肺癌NCCN指南。此外,一些临床试验的研究显示,在其它肿瘤中,PD-L1的表达水平与患者使用免疫检查点抑制剂的疗效亦存在相关性[8, 10]。



 4:PD-1和PD-L1的免疫组化分析[10]

(A) MM患者组织样本中PD-L1的表达水平检测(DAB),1% (i), 1% to 49% (ii), 50% (iii),下方为相应的骨髓瘤细胞标志物MUM1 的组织染色(ACE)(B) T淋巴细胞中CD3染色 (i)和 PD-1染色 (ii)。


适用于IHC检测的PD-L1抗体有哪些?


目前FDA批准了2款PD-1抑制剂(Opdivo和Keytruda)和3款PD-L1抑制剂(Tecentriq、Imfinzi、Bavencio)上市。同时,也分别批准了相应的伴随/补充诊断抗体:28-8、22C3、SP142、SP263(克隆号,其中Bavencio无指定PD-L1诊断抗体)这4个PD-L1单抗,用于PD-L1表达水平的IHC检测[11]。


目前在NSCLC(非小细胞肺癌)治疗中,每个PD抑制剂都开发了相应的特异性PD-L1免疫组化(IHC)检测方法,以评估NSCLC中恶性肿瘤和/或免疫细胞上的PD-L1表达水平。前文已经提到OPDIVO(nivolumab,BMS)在NSCLC患者的治疗中获得了极大的成功,且疗效与PD-L1的表达水平呈现相关性,证明了补充诊断的重要性[9]。


下表列出了FDA以及在欧洲和日本批准的PD-L1单抗[12]:

bbreviations: IC, immune cells; IVD, in vitro diagnostic; NA, not applicable; NSCLC, non–small-cell lung cancer; NSQ, non-squamous; PD-L1, programmed death-ligand 1; SQ, squamous; TC, tumor cells.

*All assays score cells at any intensity.

†TC01%, TC1 1% to5%, TC2 5% to , 50%, 50%, TC3 50%, IC01%, IC1 1% to5%, IC2 5% to , 10%, IC3 10%.

表1:用于NSCLC IHC诊断的PD-L1抗体[12]


目前PD-L1检测仍然存在一些问题,包括:


  • 检测技术方面,如不同的检测抗体、平台以及不同阈值的问题;

  • 生物学方面,如肿瘤内和肿瘤间异质性;

  • 组织来源方面,如细胞学标本,存档标本与新鲜标本,原发部位与转移灶等。样本制备推荐参考FDA 批准的尿路上皮癌IVD分析中的操作(表2)

NBF, neutral buffered formalin; TC, tumor cell; UC, urothelial carcinoma,From here


除了染色技术外,抗体的特异性也尤其重要。而目前我国PD-L1的检测比较混乱:

  • 染色技术及条件的不统一

  • 染色的抗体多样

  • 病理评价标准尚未统一

这些都导致患者检测PD-L1的价值降低。因此,选择合适的抗体至关重要。


推荐选择经FDA批准的克隆号28-8、SP142,用于IHC、WB、流式检测。点击下图查看详情:

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参考文献


1. Ishida, Y., et al., Induced expression of PD-1, a novel member of the immunoglobulin gene superfamily, upon programmed cell death. EMBO J, 1992. 11(11): p. 3887-95.

2. Dong, H., et al., B7-H1, a third member of the B7 family, co-stimulates T-cell proliferation and interleukin-10 secretion. Nat Med, 1999. 5(12): p. 1365-9.

3. Freeman, G.J., et al., Engagement of the PD-1 immunoinhibitory receptor by a novel B7 family member leads to negative regulation of lymphocyte activation. J Exp Med, 2000. 192(7): p. 1027-34.

4. Strome, S.E., et al., B7-H1 blockade augments adoptive T-cell immunotherapy for squamous cell carcinoma. Cancer Res, 2003. 63(19): p. 6501-5.

5. Chen, D.S. and I. Mellman, Elements of cancer immunity and the cancer-immune set point. Nature, 2017. 541(7637): p. 321-330.

6. Shukuya, T. and D.P. Carbone, Predictive Markers for the Efficacy of Anti-PD-1/PD-L1 Antibodies in Lung Cancer. J Thorac Oncol, 2016. 11(7): p. 976-88.

7. Grosso, J., et al., Programmed death-ligand 1 (PD-L1) expression in various tumor types. Journal for ImmunoTherapy of Cancer, 2013. 1(1): p. P53.

8. Patel, S.P. and R. Kurzrock, PD-L1 Expression as a Predictive Biomarker in Cancer Immunotherapy. Molecular Cancer Therapeutics, 2015. 14(4): p. 847-856.

9. PD-L1 IHC 28-8 pharmDx .pdf. 2015.

10. Badros, A., et al., Pembrolizumab, pomalidomide, and low-dose dexamethasone for relapsed/refractory multiple myeloma. Blood, 2017. 130(10): p. 1189-1197.

11. Ancevski Hunter, K., M.A. Socinski, and L.C. Villaruz, PD-L1 Testing in Guiding Patient Selection for PD-1/PD-L1 Inhibitor Therapy in Lung Cancer. Mol Diagn Ther, 2018. 22(1): p. 1-10.

12. Buttner, R., et al., Programmed Death-Ligand 1 Immunohistochemistry Testing: A Review of Analytical Assays and Clinical Implementation in Non-Small-Cell Lung Cancer. J Clin Oncol, 2017. 35(34): p. 3867-3876.


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